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发表于 2017-3-19 12:39:12
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几个家族的IDP,如晚期胚胎发生丰富(LEA)蛋白和亲水性,已知或怀疑在跨越生活的所有王国的生物体的胁迫耐受中的作用(Chakrabortee等人,2012,Dang等人,2014,Garay-Arroyo等人,2000),并且最近的研究证明在异源表达MAHS蛋白的细胞中稍微改善的高渗性耐受性(Tanaka等人,2015)。这些观察,加上这一事实的TDP通过在干燥诱导H. dujardini,表明它们在缓步动物胁迫耐受性作用(Yamaguchi等,2012,Tanaka等,2015年)。然而,直到现在还没有进行直接检查环境条件对编码TDP的基因的表达或其参与tardigrade干燥耐受性的影响的研究。
组成型表达或富集的TDPs在干燥期间守恒在Eutardigrades
我们假设高水平的TDP转录物干燥杜氏盐藻是更普遍的干燥耐受性tardigrades的特点。为了测试这个假设,我们从第二个干燥耐受的tardigrade物种(Paramacrobiotus richtersi)中测序水合和干燥的转录组,其也不能耐受快速干燥(Wright,1989)。结果概括我们H. dujardini观察,以31 20 CAHS成绩单,2 19 SAHS成绩单,并在干燥的丰富0-2 MAHS成绩单P. richtersi(图3 A)。
为了测试tardigrade物种是否需要预处理的程度反映了干燥后TDP的诱导,我们组装并分析了第三种tardigrade物种的转录组(从公众可获得的短读数),其中tardigrade物种是Tyrigesium(图 1A),其需要很多少预处理(Wright,1989)。M. tardigradum干燥(期间没有显著丰富TDP功耗任何表达图3 B)。然而,几个CAHS成绩单在组成性高水平表达(图 3B)。例如,一个CAHS转录物是鉴定的第三丰富的转录物(图 3B)。
总之,这些数据表明不同tardigrade物种中TDP的表达水平反映了该物种需要预处理的程度。在需要广泛预处理的物种(H.dujardini和P.richtersi)中,许多TDP在干燥时上调,而在需要相对较少预处理(tardigradum)的tardigrade中,这些基因不响应干燥,但是以高水平组成型表达。
干燥容差要求特定于Tardigrade的IDPs
为了测试TDP是否需要tardigrades生存干燥,我们执行RNAi(Tenlen等,2013)以破坏特定基因的功能。我们靶向高诱导(CAHS和SAHS)和组成型活性(SAHS)TDP,并测试杜氏利什曼病在控制(水合)和干燥条件下存活的能力。对于所有治疗,在水合条件下,存活没有显着降低(图4A)。然而,与对照处理,GFP RNAi相比,靶向四个高度诱导(13至22倍)CAHS基因中的两个显着(p <0.01)减少干燥后的存活率(图 4B )。此外,与GFP RNAi对照相比,诱导(5倍)SAHS基因的RNAi靶向导致干燥后存活的显着(p <0.01)减少(图 4B )。这些结果表明,在干燥tardigrades表示高水平的一些TDPs也是tardigrades生存干燥的必要条件。
已经提出,tardigrades可以首先演变干燥和获得耐受其他应力(交叉耐受)作为干燥耐受的副产品的能力(Jönsson,2003)。已经研究了其他系统中的交叉耐受性,但是尽管在多种生物体中进行了多次研究,但仍没有共识(Levis等人,2012,Tammariello等人,1999)。这使得从其他生物到tardigrades的结论很难。如果tardigrades确实具有交叉耐受,人们会预期不同形式的压力会诱导基因表达的类似变化(Sinclair等,2013)。为了测试这个想法,我们测序逐渐冷冻H.杜鹃花标本的转录组,并将冻结诱导的基因表达的变化与干燥诱导。在这些胁迫条件下表达的变化是不同的,在胁迫条件(冷冻或干燥)中的基因表达比对照条件(水合)更类似于其他胁迫条件(图5A)。此外,17个CAHS转录物中只有2个在冷冻期间富集(相对于在干燥条件下17个中的11个),并且这些基因以相对低的水平表达并且经历表达的小变化(图 5B )。在杜氏利什曼病冷冻期间没有SAHS或MAHS转录物富集(图5B)。有趣的是,相对于双链GFP RNAi对照,我们的CAHS或SAHS RNAi处理中没有一个显着降低冷冻tardigrades的存活(图 5C)。我们的RNAi结果,加上观察到的冷冻和干燥转录组之间的差异表明不同的压力机械链接比以前怀疑。
Tardigrade特异性IDPs增加异源系统和体外的干燥耐受性
研究隐球菌生物体的许多项目的长期目标是鉴定可保护或稳定敏感生物材料的蛋白质和分子。以前的研究已经确定干燥相关的IDPs,例如LEA蛋白,作为体内和体外系统中的足够的保护剂(Dang等人,2014,Goyal等人,2005)。为了测试TDP是否可能是良好的保护剂,我们通过定量酵母和工程改造成外源表达CAHS蛋白的细菌的干燥耐受性(存活百分比)来评估其增加其他系统的干燥耐受性的能力(图6)。在发现异源表达的基因减缓生长的情况下,这些基因从我们的分析中排除,因为减缓的生长与增加的干燥耐受性相关。几种CAHS蛋白足以将酵母的干燥耐受性增加近100倍(图6A)。在细菌中获得相似的结果,一些CAHS蛋白的外源表达导致干燥耐受性增加超过2个数量级(图 6B )。重要的是,α-突触核蛋白,一种在细胞中作为无序单体存在的蛋白质(Fauvet等人,2012,Theillet等人,2016),并且与应激耐受性没有已知的联系(Drescher等人,2012,Theillet等人。,2014),没有增加干燥条件下的生存(图 6B),表明超出TDP内在紊乱的东西对于它们的保护能力是必需的。
类似地,我们测试了纯化的CAHS蛋白保持经受干燥和再水合的乳酸脱氢酶(LDH)的活性的能力。当自身干燥和再水化时,LDH的活性降低至<1%(图 6C )。然而,当在干燥之前与CAHS蛋白质混合时,LDH活性作为增加的CAHS蛋白质浓度的函数被保留(图 6C )。重要的是,我们的实验显示,在足够浓度下,CAHS蛋白(图 6C )保持100%的LDH活性,并且这样做比海藻糖和BSA(美国食品和药物管理局批准的赋形剂人血清白蛋白)。
干燥后的玻璃化温度(Tardigrade CAHS Proteins Vitrify upon Desiccation)
在使用海藻糖生存干燥的生物体中,有关于保护机制的两种竞争但不是相互排斥的假设(Crowe,2002,Crowe等人,1987,Crowe等人,1988,Green and Angell,Levine和Slade,1992,Sakurai et al。,2008)。玻璃化假说表明海藻糖在细胞内形成玻璃状基质,物理上防止蛋白质变性,蛋白质聚集和膜融合。水替代假说认为水和细胞组分之间的氢键被细胞干燥时的海藻糖替代,这也将防止蛋白质变性,聚集和膜融合。已经表明类似海藻糖,高亲水性分子(例如IDP)可以在任一种或两种机制中起作用(Sakurai等人,2008)。已知Tardigrades在干燥时玻璃化(Hengherr等人,2009)(图7A),并且在tardigrades中海藻糖的缺乏或至少低水平表明其他分子可能负责这种玻璃化状态。
TDPs是tardigrades中玻璃化和水替代的介质的主要候选物,因为它们是高度亲水的,丰富表达的和必需的以及足够的干燥耐受性。因此,我们测试CAHS蛋白质使用差示扫描量热法玻璃化的能力,并发现当干燥时,CAHS蛋白质在体外玻璃化并且当在酵母中异源表达时(图 7B,7C和S2)。应当注意,干燥杜氏利什曼原虫标本,表达tardigrade IDP的酵母和纯化的IDP 的玻璃化转变温度显着不同。这是可以预期的,因为材料的玻璃化转变温度受共溶质和湿度的影响(Kasapis等人,2003,Sakurai等人,2008),并且合理地假设tardigrade细胞的含量不同与那些在酵母中并因此将不同地影响玻璃化材料的生物物理性质。我们的数据显示,CAHS蛋白质,如海藻糖,干燥时玻璃化,并表明tardigrades可能依赖于这些高丰度蛋白质的玻璃化,大致与其他干燥耐受生物体依赖海藻糖相同。
材料的玻璃状态可以通过将其加热到超过其玻璃化转变温度(类似于加热结晶固体超过其熔融温度)来破坏,玻璃化固体转变为橡胶状态的温度。干燥tardigrades的玻璃化状态与其生存力相关(Hengherr等人,2009),我们证实了杜氏藻(图7D)。为了具体测试CAHS蛋白的玻璃化状态是否反映其保护能力,我们加热干燥的表达CAHS蛋白的酵母,低于,高于和高于其玻璃化转变温度。我们观察到具有CAHS蛋白的干酵母耐受比野生型酵母高约10℃(图 7E)。此外,表达CAHS的酵母的存活在低于其CAHS诱导的玻璃化转变温度的温度下基本上不受影响,而在玻璃化转变范围内的温度下存活率急剧下降,并且没有酵母存活超过玻璃化转变范围的温度(图 7E)。因此,与海藻糖一样,tardigrade CAHS蛋白的保护能力反映了它们的玻璃化转变温度,其中标本显示强壮的存活,但不超过玻璃化被破坏的点。
总之,我们已经证明tardigrades响应于干燥和/或组成型表达高水平的TDP表达许多TDP。干燥过程中TDP富集的水平反映了不同的Tardigrade物种对预处理(缓慢干燥)生存干燥的需求,其中需要较少预处理的物质以组成性高水平表达TDP。我们发现几个TDPs贡献功能上H.杜亚迪尼的强大生存干燥的能力。此外,这项研究表明,在tardigrades,由不同的压力条件诱导的基因表达的变化比怀疑更不同。我们的研究表明CAHS蛋白质在原核和真核细胞中的外源表达足以增加这些系统中的干燥耐受性。据我们所知,TDP代表待鉴定的tardigrade干燥耐受性的第一功能介质。我们的研究结果提供了证据,蛋白质,特别是IDPs可以通过玻璃化保护生物材料。海藻糖和CAHS蛋白似乎通过相同的机制发挥作用的事实证明了会聚进化的优雅和通过非常不同的手段(糖与蛋白质介体)达到相似生物机制的能力。我们推测,玻璃化保护干燥敏感大分子通过将它们捕获在无定形基质的孔内,防止其变性,聚集,融合和碎裂。我们的机械和功能数据,加上以前的观察和推测,变性球状蛋白和IDP玻璃化干燥(Hoseney等人,1986年,Sochava和Smirnova,1993年),暗示通过玻璃化蛋白质的脱水耐受现象可能是比普遍赞赏。更广泛地,我们的研究突出无序蛋白在介导应激耐受性的多样性和功能作用。我们预计,这项工作将成为追求干旱耐受性领域的长期目标的基础,包括抗旱作物的工程和干燥状态下敏感药物和细胞的稳定。
作者贡献
概念化(Lead)TCB(支持)BG,GJP; 调查,TCB,HT,AHB,SP,AES,IG; 资源,IG,LR,HT,DK; 写作 - 原稿,TCB,SP,GJP; 写作 - 审查和编辑,TCB,HT,AHB,SP,AES,IG,LR,GJP,DK,BG,监督,TCB,LR,DK,BG,GJP
致谢
这项工作由NASA(NNX15AB44G到TCB)和国家科学基金会(MCB 1410854和CHE 1607359到GJP,IOS 1557432和1257320到BG)支持。LR和IG得到了摩德纳大学和雷焦艾米利亚大学青年研究员国际流动性和2015年的La Ricerca基金会的支持。我们承认Harold和Leila Y. Mathers慈善基金会支持HT和生命科学研究基金会的Simons基金会支持TCB
补充信息
文件S1。图S1和S2和猝发CAHS,MAHS和SAHS蛋白质中的紊乱的生物信息预测,与图2相关
CAHS,MAHS和SAHS蛋白序列用作IUPRED无序蛋白预测服务器(http://iupred.enzim.hu/)(Dosztányi等人,2005)的输入。
数据S1。差分表达分析统计,与图1和图3相关
(标签1)H.djardini湿对干转录组,(标签2)P.richtersi湿转录组与干转录组,(标签3)M.tardigradum湿转录组与干转录组的边缘差异表达分析输出,和(标签4)湿与冷冻转录组。列表示Trinity转录物ID(列A),计算的log 2倍数变化(列B),log 2计数/百万读数(列C),p值差异表达(D列)和假发现率(列E)。对于每个差异表达实验,将湿读数计数与应激条件读数计数进行比较。因此,列C中的正值表明在对照(湿)条件下转录物富集。B列中的负值表明转录物在胁迫下富集。
数据S2。这些实验中使用的基因和蛋白质的序列,与图4,5和6相关
本手册中使用的DNA和蛋白质序列列表。
收稿日期: 2016年7月26日; 收到修订形式: 2016年12月14日; 接受: 2017年2月16日; 发布时间:2017年3月16日
©2017 Elsevier Inc.
水熊 |
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